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2020, 37(9):891-896, 902.doi:10.13213/j.cnki.jeom.2020.20158

硫辛酸对全氟辛酸致雄性大鼠生殖毒性的保护作用


1a. 包头医学院营养与食品健康研究所, 内蒙古 包头 014040 ;
1b. 包头医学院公共卫生学院, 内蒙古 包头 014040 ;
2. 包头医学院第一附属医院, 内蒙古 包头 014010

收稿日期: 2020-04-08;  录用日期:2020-07-20;  发布日期: 2020-10-15

基金项目: 内蒙古自治区级大学生创新创业训练计划项目(201910127005);包头医学院科学研究基金项目(BYJJ-YF-2018021);包头医学院硕士研究生科研创新资助项目(bycx2019003)

通信作者: 戈娜, Email: genayy80@163.com  

作者简介: 杨冬晗(1996-), 女, 硕士生; E-mail:1097179236@qq.com

利益冲突  无申报

[背景] 全氟辛酸(PFOA)对生殖健康的损害越来越受到人们的重视,硫辛酸(LA)是否可以缓解PFOA所致的生殖损伤尚不明确。

[目的] 探讨LA对PFOA致雄性大鼠生殖毒性是否具有保护作用。

[方法] 6周龄雄性SD大鼠40只,随机分为5组,每组8只。各组处理如下:正常对照组,玉米油(0.2%体重);LA对照组,100 mg·kg-1 LA;PFOA染毒组,10 mg·kg-1 PFOA;低剂量LA干预组,10 mg·kg-1 PFOA+50 mg·kg-1 LA;高剂量LA组,10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA。灌胃染毒7周后,腹主动脉取血,留取睾丸、附睾,计算脏器系数。采用计算机辅助精子分析系统进行精子数量的检测,HE染色进行睾丸组织的病理学观察,分光光度法检测睾丸内琥珀酸脱氢酶(SDH)、乳酸脱氢酶(LDH)活性,酶联免疫吸附试验(ELISA)法检测大鼠血清中睾酮和卵泡刺激素(FSH)含量,Western blotting法检测各组大鼠睾丸组织中卵泡刺激素受体(FSHR)蛋白表达水平。

[结果] PFOA染毒组大鼠睾丸脏器系数较正常对照组和LA对照组增高分别为(9.41±0.40)‰、(7.50±0.66)‰,(8.21±0.94)‰(P < 0.05),附睾精子数量降低[(10.63±2.07)×106,(21.00±3.89)×106,(17.63±5.01)×106P < 0.05]。睾丸组织病理学结果显示:PFOA染毒组较正常对照组大鼠生精小管内生精细胞层次减少,生精细胞排列紊乱,生精上皮出现较多的空泡化改变,间质细胞数量减少且排列紊乱;而各剂量LA干预组病变明显减轻。PFOA染毒组大鼠血浆SDH、LDH活性较正常组大鼠下降[(1.15±0.44)、(1.74±0.58)U·g-1;(1.82±0.64)、(2.58±0.64)U·g-1P < 0.05],而经100 mg·kg-1 LA干预后SDH活性有明显逆转,且差异有统计学意义(P < 0.05)。此外,PFOA染毒组大鼠与正常对照组相比,睾丸内睾酮水平降低,FSH水平升高,睾丸组织FSHR蛋白表达量降低(P < 0.05),而LA干预后可明显看到FSH水平下降,且高剂量LA效果更加明显,同时也减轻了睾丸组织FSHR蛋白的下降程度。

[结论] PFOA对雄性大鼠具有生殖毒性效应,而适量的LA补充可以缓解PFOA所致的生殖损伤。

关键词: 全氟辛酸;  硫辛酸;  生殖毒性;  大鼠;  性激素 

全氟辛酸(pentadecafluorooctanoic acid,PFOA)是一种人工合成的有机氟化物,被广泛应用于纺织、食品包装、家具以及各种医疗设备中[1],近年来其对男性生殖健康的损害越来越受到人们的重视。PFOA可通过饮食和空气污染等多种途径进入人体,可致肝脏、神经等多器官的损害,美国环境保护署规定的PFOA饮用水阈值为200 ng·L-1[2]。即使是非职业暴露人群,也能在其肝、肾、肺、血液、甲状腺、胰腺、性腺等组织中检出,其中生殖系统是其最易感的靶器官之一。有研究结果表明PFOA暴露能够造成子代雌鼠的低体重现象,还会导致琥珀酸脱氢酶(succinate dehydrogenase,SDH)活性降低[3-4]。研究发现10mg·kg-1的PFOA可明显破坏雄性小鼠生精小管,降低精子数量[5]。Qiu等[6]还发现,黑头呆鱼暴露于PFOA后血清雌二醇水平升高,睾酮(testosterone)浓度明显降低,而睾酮在曲细精管中的浓度是通过卵泡刺激素受体(follicle-stimulating hormone receptor,FSHR)和乳酸脱氢酶(lactic acid dehydrogenase,LDH)结合后激活多种途径表达,三种激素相互作用,共同调控生精细胞的分裂和分化,进而影响合成睾酮的各类酶的生物活性,但具体机制尚不明确。

硫辛酸(lipoic acid,LA)的化学名为1,2-二硫戊环-3-戊酸,广泛存在于自然界内,在动物的肝脏、肾脏以及菠菜、番茄中含量丰富。LA具有抗氧化、调节糖代谢、调节体内脂质代谢、抗炎、降低内毒素诱导的急性炎症反应,减轻组织的病理损伤和提高男性生育能力等功能[7]。LA在糖尿病等多种疾病的治疗中备受关注,目前在临床上也被用于消除疲劳、改善痴呆和美容养颜等[8-9]。Haghighian等[10]一项关于LA的临床试验发现,特发性弱精子症不育患者每天补充LA 600 mg,12周后患者精液的抗氧化指标明显增强,且精子总数、精子浓度、精子活力均明显上升,说明LA在精子的抗氧化损伤、维持其结构与功能的完整性中均起了一定作用。张国巍等[11]利用硫辛酸对奥硝唑诱导的少弱精子症雄性大鼠进行干预,发现50、100 mg·kg-1的LA能够较好地改善大鼠生精功能,提高精子质量。本次研究利用LA干预PFOA诱导的雄性大鼠,考察LA对雄性大鼠生殖功能是否具有保护作用。

1   对象与方法

1.1   主要试剂及仪器

PFOA、LA(分析纯,上海阿拉丁生化科技股份有限公司,中国),卵泡刺激素(follicle-stimulating hormone,FSH)及睾酮酶联免疫吸附试验(enzymelinked immunosorbent assay,ELISA)检测试剂盒(CloudClone Corp,美国),LDH试剂盒、SDH试剂盒(南京建成生物工程研究所,中国),兔抗鼠多克隆FSHR抗体(BOSTER,美国),多克隆β-actin抗体、山羊抗兔二抗(中杉金桥,中国)。

PFOA、LA(分析纯,上海阿拉丁生化科技股份有限公司,中国),卵泡刺激素(follicle-stimulating hormone,FSH)及睾酮酶联免疫吸附试验(enzymelinked immunosorbent assay,ELISA)检测试剂盒(CloudClone Corp,美国),LDH试剂盒、SDH试剂盒(南京建成生物工程研究所,中国),兔抗鼠多克隆FSHR抗体(BOSTER,美国),多克隆β-actin抗体、山羊抗兔二抗(中杉金桥,中国)。

1.2   实验动物及分组

40只6周龄雄性SD大鼠,体重(160±10)g,购自斯贝福(北京)生物技术有限公司,许可证号:SCXK(京)2016-0002。适应性喂养1周后,根据体重排序后进行完全随机分组,分为5组,每组8只。各组处理如下:正常对照组,食用玉米油;LA对照组,100 mg·kg-1 LA;PFOA染毒组,10 mg·kg-1 PFOA;低剂量LA干预组,10 mg·kg-1 PFOA+50 mg·kg-1 LA;高剂量LA干预组,10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA。LA和PFOA用玉米油(用量为大鼠体重的0.2%)溶解,每日固定时间灌胃给药,实验干预期为7周。大鼠自由摄水摄食,同时控制动物实验室室温在20~25℃,相对湿度为40%~60%,昼夜周期为12 h/12 h。染毒7周后,实验大鼠禁食不禁水12 h,采用0.3%戊巴比妥麻醉,腹主动脉采血法处死大鼠,处死前称重,处死后立即剥离睾丸和附睾组织。动物实验均遵循包头医学院有关动物管理和使用规定和《关于动物伦理与利的作者指南共识》。

1.3   检测指标及方法

1.3.1   脏器系数

剥离睾丸和附睾组织后,称重并计算脏器系数。脏器系数=(脏器湿重/体重)×1 000‰。

1.3.2   精子计数

采用计算机辅助精子分析系统进行精子数量的检测。取附睾3 mm×3 mm大小,称重,放入装有8 mL磷酸盐缓冲液的烧杯中,孵育20 min,备用。取细胞计数板放上盖玻片,滴10 μL精子悬液,再滴10 μL伊红溶液,显微镜下计数,按照“Z”字计算5个大方格的精子总数[12]

1.3.3   睾丸组织病理学观察

利用4%的多聚甲醛对睾丸组织固定24 h,常规脱水,石蜡包埋,组织切片,进行苏木精-伊红染色(hematoxylin and eosin staining,HE染色),光学显微镜下观察睾丸的组织病理学变化。

1.3.4   睾丸组织LDH、SDH活性的测定

制备10%睾丸组织匀浆,取上清液,采用二喹啉甲酸(bicin choninic acid,BCA)法测定总蛋白含量,分光光度法测定LDH、SDH活性。

1.3.5   血清FSH、睾酮含量的测定

血清FSH、睾酮的测定采用ELISA法,严格按试剂盒操作说明进行。

1.3.6   Western blotting法测定大鼠睾丸组织FSHR蛋白表达量

称取50 mg睾丸样本剪碎后研磨,500 μL裂解液处理30 min,4℃、12 000 r·min-1(离心半径为10 cm)离心10 min,离心后取上清液测定蛋白浓度。根据蛋白定量结果,加入相应体积的4×蛋白上样缓冲液,混匀变性。凝胶内加样后进行电泳及半干法转膜,室温封闭2 h,加入FSHR(1:500)或β-actin(1:1 000)一抗工作液,4℃反应过夜。洗涤,二抗室温孵育90 min,经显影定影液显色,胶片扫描后,用Tanon 1600全自动数码凝胶图像分析系统测定条带灰度值并进行计算。

1.4   统计学分析

数据采用SPSS 16.0软件统计分析,计量资料数据均以x±s表示,采用方差齐性检验和单因素方差分析,进一步两两比较采用LSD-t检验,检验水准为α=0.05(双侧检验)。

2   结果

2.1   各组大鼠脏器系数

干预7周后,与正常对照组相比,PFOA染毒组和各剂量LA干预组大鼠体重均有不同程度下降(P < 0.05),且不同剂量LA干预组与LA对照组相比也有明显降低(P < 0.05),见图 1。各组间大鼠睾丸质量无明显差别。PFOA染毒组附睾质量与正常对照组和LA干预组相比明显下降(P < 0.05)。PFOA染毒组和不同剂量LA干预组睾丸脏器系数与正常对照组和LA对照组相比均升高(P < 0.05),但PFOA染毒组升高最为明显。PFOA染毒组和高剂量LA干预组附睾脏器系数与正常对照组相比均升高(P < 0.05),见表 1

图 1

LA干预PFOA染毒大鼠体重变化(n=8)

Figure1.

The changes of body weight of PFOA exposed rats after LA intervention (n=8)

[注]A:正常对照组;B:LA对照组(100mg·kg-1 LA);C:PFOA染毒组(10mg·kg-1 PFOA);D:低剂量LA干预组(10mg·kg-1 PFOA+50mg·kg-1 LA);E:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100mg·kg-1 LA)。
表1

LA干预PFOA染毒大鼠7周后的基本情况(x±sn=8)

Table1.

General information of rats with 7-week PFOA exposure after LA intervention (x±s, n=8)

2.2   精子计数情况

图 2可知,PFOA染毒组大鼠精子数量明显低于正常对照组和LA对照组(P < 0.05),而进行LA干预后大鼠精子数量较染毒组呈现明显的回升(P < 0.05),但还不能达到正常水平。

图 2

LA干预PFOA染毒大鼠精子计数变化(x±sn=8)

Figure2.

The sperm count changes of PFOA exposed rats after LA intervention (x±s, n=8)

[注]A:正常对照组;B:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);C:PFOA染毒组(10 mg·kg-1 PFOA);D:低剂量LA干预组(10 mg·kg-1PFOA+50 mg·kg-1 LA);E:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA)。a:与正常对照组比较,P < 0.05;b:与LA对照组比较,P < 0.05;c:与PFOA染毒组比较,P < 0.05。

2.3   睾丸组织的病理学改变

HE染色结果显示,正常对照组和LA对照组大鼠睾丸内的曲细精管形态完整,曲细精管内各级生精细胞排列整齐,形态规则,层次清楚;支持细胞围绕各级生精细胞排列,各级生精细胞呈紧密有序排列,精子细胞级精子结构完整,排列整齐密集,睾丸间质内散在或群集分布着间质细胞,间质细胞成群分布,发育正常。PFOA染毒组大鼠睾丸生精小管内细胞层次减少,生精细胞排列紊乱,生精上皮出现较多的空泡化改变,细胞间质受损,紧密连接遭到破坏,间质细胞数量减少,排列紊乱。而LA干预组大鼠较PFOA染毒组大鼠睾丸组织病理改变明显得到改善,如图 3所示。

图 3

LA干预PFOA染毒大鼠睾丸组织病理学变化(×400,HE染色)

Figure3.

Histopathological changes of testis in PFOA exposed rats after LA intervention (×400, HE staining)

[注] A:正常对照组;B:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);C:PFOA染毒组(10mg·kg-1 PFOA);D:低剂量LA干预组(10mg·kg-1 PFOA+50mg·kg-1 LA);E:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA)。箭头所指为曲细精管管腔和支持细胞。正常对照组和LA对照组曲细精管和支持细胞结构相对完整;PFOS染毒组管腔内可见生精细胞脱落,支持细胞排列紊乱;不同剂量的LA干预组均得到改善,表现为各级生精细胞排列较为整齐,支持细胞和间质细胞排列相对紧密且有序。

2.4   SDH和LDH活性的变化

与正常对照组[(1.82±0.64)、(2.58±0.64)U·g-1]和LA对照组相比,PFOA染毒组大鼠睾丸SDH和LDH活性均明显降低[(1.15±0.44)、(1.74±0.58)U·g-1](P < 0.05);LA各剂量干预组LDH活性在数值上虽然均较正常对照组有所下降,但并无统计学差异(P > 0.05)。而SDH活性在100 mg·kg-1 LA干预组与PFOA染毒组相比有较大程度升高(P < 0.05),见图 4

图 4

LA干预PFOA染毒大鼠睾丸组织SDH和LDH活性变化(x±sn=8)

Figure4.

The changes of SDH and LDH activities in testicular tissues of PFOA exposed rats after LA intervention (x±s, n=8)

[注] A:LDH;B:SDH。1:正常对照组;2:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);3:PFOA染毒组(10 mg·kg-1 PFOA);4:低剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+50 mg·kg-1 LA);5:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA)。a:与正常对照组比较,P < 0.05;b:与LA对照组比较,P < 0.05;c:与PFOA染毒组比较,P < 0.05。

2.5   血清睾酮和FSH含量的变化

与正常对照组和LA对照组相比,PFOA染毒组大鼠血清FSH含量升高,睾酮含量下降(P < 0.05)。不同剂量LA干预组与PFOA染毒组相比,FSH含量有不同程度下降(P < 0.05),且呈现一定的剂量-效应关系,睾酮含量有不同程度上升,见图 5

图 5

LA干预PFOA染毒大鼠FSH、睾酮水平变化(x±sn=8)

Figure5.

The changes of FSH and testosterone levels in PFOA exposed rats after LA intervention (x±s, n=8)

[注] A:FSH含量;B:睾酮含量。1:正常对照组;2:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);3:PFOA染毒组(10 mg·kg-1 PFOA);4:低剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+50 mg·kg-1 LA);5:高剂量LA干预组(10mg·kg-1 PFOA+100mg·kg-1 LA)。a:与正常对照组比较,P < 0.05;b:与LA对照组比较,P < 0.05;c:与PFOA染毒组比较,P < 0.05;d:与低剂量LA干预组比较,P < 0.05。

2.6   睾丸组织FSHR蛋白变化

Western blotting结果显示,PFOA染毒组FSHR蛋白含量与其他各组相比均,有较大程度下降(P < 0.05),而随着LA干预剂量的升高,明显逆转了这种下降(P < 0.05),其中100 mg·kg-1 LA干预组效果最为明显,如图 6所示。

图 6

LA干预PFOA染毒大鼠的FSHR蛋白表达变化(x±sn=6)

Figure6.

The changes of FSHR protein expression levels in PFOA exposed rats after LA intervention (x±s, n=6)

[注] A:电泳条带图;B:蛋白相对表达量。1:正常对照组;2:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);3:PFOA染毒组(10 mg·kg-1 PFOA);4:低剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+50 mg·kg-1 LA);5:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA)。a:与正常对照组比较,P < 0.05;b:与LA对照组比较,P < 0.05;c:与PFOA染毒组比较,P < 0.05;d:与低剂量LA干预组比较,P < 0.05。

3   讨论

本研究通过对雄性大鼠睾丸和附睾系数计算、睾丸病理学观察、精子计数、睾丸组织SDH和LDH活性评价,证实LA对PFOA致雄性大鼠生殖毒性具有明显的改善作用;进一步检测发现LA可调节PFOA所致的大鼠血清睾酮和FSH含量异常以及使睾丸组织FSHR蛋白表达量升高,提示这也许是LA对雄性大鼠生殖功能保护作用的可能机制。

睾丸组织中支持细胞正常与否决定着精原细胞增殖、各级生精细胞分化和精子成熟。曲细精管由支持细胞和各级生精细胞组成,其中支持细胞的一侧附着于生精细胞上皮的基底层,另一侧向外延伸作为精原细胞的附着点,并为精子的形成提供营养物质[13]。除此之外,支持细胞还是外源毒性物质作用的靶点之一,而PFOA的作用正是破坏支持细胞的紧密连接从而造成大鼠生精功能受损,睾丸结构破坏,曲细精管闭锁或排列紊乱以及生精细胞脱离曲细精管。同时,精子数量减少又可反映出化学物质产生的毒性作用影响睾丸组织的结构和各级生精细胞的生长,导致睾丸组织内的精子在形成期受损[14]。而位于生精细胞和支持细胞内LDH与线粒体标志酶SDH是精子和生精细胞糖代谢过程中的重要酶,其活性大小与精子的成熟密切相关[15]。本实验中,PFOA染毒组大鼠支持细胞连接被破坏,间质受损,曲细精管排列紊乱,生精细胞排列紊乱层次减少,大鼠精子数量明显降低,睾丸组织LDH、SDH活性下降。而100 mg·kg-1 LA干预后SDH水平显著提高,同时可见50 mg·kg-1和100 mg·kg-1 LA干预后睾丸组织结构和精子数量均有大幅改善,与Mohasseb等[16]关于LA补充可以改善糖尿病所致的生殖系统损伤和生殖细胞凋亡的结果相符,说明适量的LA补充能够保护睾丸组织,减轻PFOA造成的生殖系统损伤。

FSHR是FSH特异表达于睾丸支持细胞表面的受体,对于精子的发育具有重要作用。在雄性中,FSH与支持细胞膜上FSHR结合,活化腺苷酸环化酶,使胞内环磷酸腺苷水平升高,从而激活多种途径,通过表达雄激素结合蛋白等蛋白产物,保持睾酮在曲细精管中的浓度,控制生精细胞的分裂分化[17]。而睾酮可通过合成雌二醇反馈性地抑制下丘脑-垂体对FSH的分泌,FSH亦可通过调节抑制素B来调节睾酮。本次研究发现,睾酮水平在PFOA染毒组下降,而FSH水平升高,这与李俊涛等[18]对生殖损伤的激素水平研究结果相一致。该结果提示PFOA在大鼠体内可能起到了内源性雌激素的作用,一方面可能是由于PFOA直接对睾丸间质细胞造成了损伤,另一方面可能通过下丘脑-垂体-睾丸轴的负反馈调节抑制了睾酮的合成分泌。而FSH水平升高可能是由于支持细胞损伤后,原本由支持细胞分泌的一种能够抑制垂体分泌FSH的蛋白质—抑制素分泌减少,进而对垂体分泌FSH的抑制作用降低而导致的。Prathima等[19]研究表明,LA能消除砷染毒对大鼠睾丸和附睾造成的氧化应激损伤,是由于LA的抗氧化作用、砷螯合作用和甾体生成特性,从而恢复了砷暴露大鼠的雄性生殖性能。

由本研究可以看出各LA干预组睾酮水平明显上升,FSH水平明显下降,FSHR蛋白表达水平明显升高,且随着LA剂量的增加,FSH和FSHR水平呈现出的关系说明LA可以增加FSHR的表达水平,进而与更多的FSH结合,恢复损伤的支持细胞的生理功能,促进生精细胞的增殖和分化,促进睾丸发育和精子的成熟,以此来修复大鼠损伤的生殖功能。

综上,PFOA暴露对大鼠生殖系统会产生毒效应,表现为睾丸组织病理损伤,精子数量减少,睾丸组织中相关酶的活性发生改变,继而诱发血清性激素水平紊乱,血清睾酮浓度下降,FSH浓度升高。而补充适量的LA可通过上调睾丸组织FSHR蛋白表达,进而使紊乱的性激素水平及睾丸组织中与精子成熟密切相关的酶活性逐渐趋于正常,最终起到改善PFOA所致雄性大鼠生殖损伤的作用,但具体机制还需进一步研究。同时,本研究中的染毒方式、干预时间和剂量是否会对大鼠其他系统造成影响,则还有待更深入的探究。

图 1

LA干预PFOA染毒大鼠体重变化(n=8)

Figure 1

The changes of body weight of PFOA exposed rats after LA intervention (n=8)

[注]A:正常对照组;B:LA对照组(100mg·kg-1 LA);C:PFOA染毒组(10mg·kg-1 PFOA);D:低剂量LA干预组(10mg·kg-1 PFOA+50mg·kg-1 LA);E:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100mg·kg-1 LA)。
表1

LA干预PFOA染毒大鼠7周后的基本情况(x±sn=8)

Table 1

General information of rats with 7-week PFOA exposure after LA intervention (x±s, n=8)

图 2

LA干预PFOA染毒大鼠精子计数变化(x±sn=8)

Figure 2

The sperm count changes of PFOA exposed rats after LA intervention (x±s, n=8)

[注]A:正常对照组;B:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);C:PFOA染毒组(10 mg·kg-1 PFOA);D:低剂量LA干预组(10 mg·kg-1PFOA+50 mg·kg-1 LA);E:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA)。a:与正常对照组比较,P < 0.05;b:与LA对照组比较,P < 0.05;c:与PFOA染毒组比较,P < 0.05。
图 3

LA干预PFOA染毒大鼠睾丸组织病理学变化(×400,HE染色)

Figure 3

Histopathological changes of testis in PFOA exposed rats after LA intervention (×400, HE staining)

[注] A:正常对照组;B:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);C:PFOA染毒组(10mg·kg-1 PFOA);D:低剂量LA干预组(10mg·kg-1 PFOA+50mg·kg-1 LA);E:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA)。箭头所指为曲细精管管腔和支持细胞。正常对照组和LA对照组曲细精管和支持细胞结构相对完整;PFOS染毒组管腔内可见生精细胞脱落,支持细胞排列紊乱;不同剂量的LA干预组均得到改善,表现为各级生精细胞排列较为整齐,支持细胞和间质细胞排列相对紧密且有序。
图 4

LA干预PFOA染毒大鼠睾丸组织SDH和LDH活性变化(x±sn=8)

Figure 4

The changes of SDH and LDH activities in testicular tissues of PFOA exposed rats after LA intervention (x±s, n=8)

[注] A:LDH;B:SDH。1:正常对照组;2:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);3:PFOA染毒组(10 mg·kg-1 PFOA);4:低剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+50 mg·kg-1 LA);5:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA)。a:与正常对照组比较,P < 0.05;b:与LA对照组比较,P < 0.05;c:与PFOA染毒组比较,P < 0.05。
图 5

LA干预PFOA染毒大鼠FSH、睾酮水平变化(x±sn=8)

Figure 5

The changes of FSH and testosterone levels in PFOA exposed rats after LA intervention (x±s, n=8)

[注] A:FSH含量;B:睾酮含量。1:正常对照组;2:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);3:PFOA染毒组(10 mg·kg-1 PFOA);4:低剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+50 mg·kg-1 LA);5:高剂量LA干预组(10mg·kg-1 PFOA+100mg·kg-1 LA)。a:与正常对照组比较,P < 0.05;b:与LA对照组比较,P < 0.05;c:与PFOA染毒组比较,P < 0.05;d:与低剂量LA干预组比较,P < 0.05。
图 6

LA干预PFOA染毒大鼠的FSHR蛋白表达变化(x±sn=6)

Figure 6

The changes of FSHR protein expression levels in PFOA exposed rats after LA intervention (x±s, n=6)

[注] A:电泳条带图;B:蛋白相对表达量。1:正常对照组;2:LA对照组(100 mg·kg-1 LA);3:PFOA染毒组(10 mg·kg-1 PFOA);4:低剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+50 mg·kg-1 LA);5:高剂量LA干预组(10 mg·kg-1 PFOA+100 mg·kg-1 LA)。a:与正常对照组比较,P < 0.05;b:与LA对照组比较,P < 0.05;c:与PFOA染毒组比较,P < 0.05;d:与低剂量LA干预组比较,P < 0.05。

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[基金项目] 内蒙古自治区级大学生创新创业训练计划项目(201910127005);包头医学院科学研究基金项目(BYJJ-YF-2018021);包头医学院硕士研究生科研创新资助项目(bycx2019003)

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[收稿日期] 2020-04-08

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硫辛酸对全氟辛酸致雄性大鼠生殖毒性的保护作用

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